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三羧甲基乙二胺-瓊脂糖

三羧甲基乙二胺-瓊脂糖
NRPB58——Ni-TED NUPharose FF Ni-TED NUPharose FF是金屬離子脫落率最-低的一款金屬螯合親和填料,配基為三羧甲基乙二胺(tris-carboxymethyl ethylene diamine,TED)基團(tuán),配位金屬離子為Ni2+,
本產(chǎn)品僅供科研實(shí)驗(yàn)用,不做其它用途!

產(chǎn)品型號(hào):

更新時(shí)間:2025-02-07

三羧甲基乙二胺-瓊脂糖

、產(chǎn)品介紹

NRPB58——Ni-TED NUPharose FF Ni-TED NUPharose FF是金屬離子脫落率最-低的一款金屬螯合親和填料,配基為三羧甲基乙二胺(tris-carboxymethyl ethylene diamine,TED)基團(tuán),配位金屬離子為Ni2+,

本產(chǎn)品的TED配基與Ni2+形成的五配位結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性好,對(duì)螯合劑、還原劑、酸、堿等試劑有著出色的耐受性,可在10mM EDTA100 mM β-ME50 mM DTT等條件下正常使用,可在pH=1pH=14的條件下處理24h后保持出色的色譜性能,也長(zhǎng)期保存在10mM NaOH 中,洗脫液中需要的咪唑濃度相對(duì)其他金屬螯合填料更低。因此,Ni-TED NUPharose FF適合用于下列純化體系:

目標(biāo)蛋白中含半胱-氨酸或者對(duì)氧敏感,需要添加 β-ME  DTT 時(shí);

目標(biāo)蛋白中含半胱-氨酸且有金屬反應(yīng)性,需要添加 DTT  EDTA 時(shí)

目標(biāo)蛋白容易被金屬蛋白酶水解,需要添加 EDTA 時(shí);

目標(biāo)蛋白對(duì)高濃度咪唑敏感,需要降低洗脫液中咪唑濃度時(shí);

真核細(xì)胞表達(dá)體系中本身含 β-ME  EDTA 的情況;

對(duì)產(chǎn)物中金屬離子含量要求嚴(yán)格時(shí)。

Ni-TED NUPharoseFF的配基偶聯(lián)工藝經(jīng)過了特殊的設(shè)計(jì),使得成品的壓力/流速特性得到大幅提升,流速和耐壓分別超過1500cm/h0.5MPa。通過配基修飾過程的優(yōu)化,本產(chǎn)品在親和力(載量)和特異性(選擇性)之間取得良好的均衡:對(duì)帶組-氨酸標(biāo)簽蛋白的結(jié)合量大于20 mg/mL的同時(shí),一步純化后樣品純度可達(dá)90%以上。

、產(chǎn)品特點(diǎn)與技術(shù)指標(biāo) 

產(chǎn)品名稱

三羧甲基乙二胺-瓊脂糖

基質(zhì)

6%交聯(lián)瓊脂糖

配基 a

三羧甲基乙二胺,螯合~60 μmol Ni2+/mL

粒徑范圍 b

45~165 μm

平均粒徑

~90 μm

動(dòng)態(tài)結(jié)合載量 c

20 mg/mL 帶組-氨酸標(biāo)簽蛋白

推薦工作流速 d

60~300 cm/h

流速與壓力 e

>1500 cm/h ,0.5 MPa

使用 pH

3~12(推薦的工作 pH),3~12(長(zhǎng)期穩(wěn)定);2~14(短期穩(wěn)定)

 

 

 

化學(xué)穩(wěn)定性

1)純化緩沖液:常用的水相緩沖液,可含有 10 mM EDTA ,100 mM β-ME  50 mM DTT。

2)在位清洗(CIP)處理:1 M NaOH 、1~2 M NaCl 、70%乙醇、 30%異丙醇,0.1~0.5%非離子型表面活性劑。

3)在下述溶液中處理特定時(shí)間,填料性能保持穩(wěn)定:10 mM NaOH (長(zhǎng)期)、0.1 M 鹽酸(24 h)、6 M 鹽酸胍(24 h)。

儲(chǔ)存與運(yùn)輸

20%乙醇,2~30 ℃

a 三羧甲基乙二胺(TED)基團(tuán)與基球之間有十個(gè)原子長(zhǎng)度的間隔臂,為親和填料提 供更加高效的捕獲效果。

b90%體積以上的微球在此粒徑范圍。

c 10%穿透下的動(dòng)態(tài)結(jié)合載量(DBC10%),測(cè)試的樣品為大腸桿菌表達(dá)帶組-氨酸標(biāo)簽的重組蛋白,6 min 停留時(shí)間。

d  并非指只能在該流速范圍內(nèi)工作。需結(jié)合柱高確定適宜的工作流速,通常情況下上樣的停留時(shí)間2~6 min 范圍內(nèi)可保持出色的親和捕獲能力和純化效率。CIP 過程的流速則一般不超過 150 cm/h。

10 cm 柱高下的測(cè)試流速及該流速下的壓力。

3、金屬螯合親和層析

金屬離子親和層析是基于蛋白質(zhì)分子表面的組-氨酸的咪唑基、半胱-氨酸的巰基和色-氨酸吲哚基能與Ni2+Co2+、Cu2+、Zn2+等形成配位結(jié)合而進(jìn)行生物大分子分離純化的過程。其中,以Ni2+為螯合離子來純化帶6個(gè)以上組-氨酸組成的標(biāo)簽蛋白最為常見,本說明書也以該體系為例簡(jiǎn)要闡述Ni-TED NUPharose FF的親和原理(圖1)。

NUPharose基球修飾上TED配基后,該配體擁有五個(gè)配位基團(tuán),其中兩個(gè)氮原子和三個(gè)氧原子與Ni2+形成牢固的螯合物。Ni2+可形成6配位數(shù)的八面體結(jié)構(gòu),剩余的一個(gè)自由配位點(diǎn)可以與溶劑分子或蛋白質(zhì)分子結(jié)合。Ni2+與組-氨酸標(biāo)簽蛋白的咪唑基團(tuán)配位結(jié)合的過程即為金屬螯合填料與目標(biāo)蛋白的特異性結(jié)合過程。提高緩沖液中咪唑的濃度可以將目標(biāo)蛋白洗脫,洗脫過程中咪唑和目標(biāo)蛋白競(jìng)爭(zhēng)與Ni2+的結(jié)合。

金屬離子親和層析過程的非特異性吸附可能會(huì)來自離子相互作用、金屬離子與含組-氨酸、半胱-氨酸、色-氨酸蛋白之間的相互作用。前者可通過提高緩沖液的離子強(qiáng)度得到抑制,通常添加500mMNaCl;后者可在上樣緩沖液中添加少量的咪唑(例如~5mM)或者在沖洗過程中添加咪唑而除去。經(jīng)過優(yōu)化,可以得到樣品純度和收率均較高的結(jié)果。

Ni-TED NUPharose FF填料在使用過程中Ni2+掉落量極少,可連續(xù)使用多次。

三羧甲基乙二胺-瓊脂糖 

、使用方法參考

4.1  色譜柱裝填

以下闡述與層析系統(tǒng)連接時(shí),填料的色譜柱裝填方法。

(1)所有需要用到的材料的溫度要與色譜操作的溫度一樣,液體做脫氣處理。

(2)填料用量計(jì)算:通過沉降定量填料體積,需要的沉降填料體積=柱體積×壓縮比(也稱壓縮因子)。沉降體積是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩(wěn)定體積。Ni-TED NUPharose FF的壓縮比為1.15。為使達(dá)到壓縮比,可通過柱頭下壓的方法,也可以通過高流速壓柱。

(3)填料清洗:將填料懸液充分搖勻后量取相應(yīng)體積,抽去液體,并用約3倍填料體積的純化水洗滌,重復(fù)3次,以除去保存液。

(4)裝柱填料懸液準(zhǔn)備:將填料轉(zhuǎn)移到適當(dāng)?shù)娜萜髦?,加入適量的裝柱液,制成 50~75 v%的裝柱填料懸液(原包裝中填料體積分?jǐn)?shù)為67%),使用前攪勻。

(5)裝填前準(zhǔn)備:在清洗干凈的層析柱下端加入裝柱液,以除去下墊片及層析柱下端的空氣,在柱內(nèi)保留少量的蒸餾水,擰緊下堵頭,調(diào)整柱子使其垂直于地面。

(6)裝填:將攪勻后的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(nèi)(必要時(shí)使用裝柱器), 為避免引入氣泡,應(yīng)使之沿層析柱內(nèi)壁自然流下。將所有填料加入后, 用裝柱液將裝柱 器加滿,擰緊裝柱器上蓋,將柱子與層析系統(tǒng)連接。

7)壓柱:使柱內(nèi)填料自然沉降(或50~150 cm/h的低流速下沉降),待填料沉降完-全后(填料與液體的界面清晰),去除裝柱器,裝上上柱頭,并將柱頭下降至界面處;通過高流速(推薦流速見下表,注意柱壓不超過0.3MPa),繼續(xù)壓柱至界面清晰穩(wěn)定,標(biāo)記界面穩(wěn)定時(shí)的柱高。停泵,打開柱頭上的閥門/堵頭,關(guān)閉柱底的閥門/堵頭,下壓柱頭至標(biāo)記位置下方與壓縮比對(duì)應(yīng)的位置,旋緊柱頭,裝柱完成。裝柱完成后,需用高流速平衡柱內(nèi)的填料。

三羧甲基乙二胺-瓊脂糖 

4.2  柱效測(cè)定和評(píng)價(jià)

完成裝柱后、使用前可通過柱效測(cè)定和評(píng)價(jià)可以確認(rèn)層析柱裝填質(zhì)量。柱效通常用 理論塔板高度(HETP)和非對(duì)稱因子(As)來評(píng)價(jià)。

 

4.3  平衡與上樣(Equilibration & Loading

金屬螯合填料與磷酸鹽、Tris-HCl等緩沖體系兼容,其中20mM PB+500mM NaClpH=7.4)的體系最為常用。初始的緩沖液稱為平衡緩沖液,記為緩沖液A。緩沖液A的特點(diǎn)為不含或者含少量咪唑,pH7~8之間居多,呈弱堿性。實(shí)際使用過程中,如果上樣料液的體積特別大,從降低成本的角度考慮,可不往料液中添加咪唑和NaCl來抑制非特異性吸附,而是在上樣后進(jìn)行沖洗來去除雜質(zhì)。

在上樣前,需用緩沖液A在操作流速下平衡層析柱,該過程通常需要5~10個(gè)柱體積的緩沖液A,以電導(dǎo)、pH等檢測(cè)信號(hào)參數(shù)不變且與緩沖液A對(duì)應(yīng)為準(zhǔn)。

上樣量可按mg目標(biāo)蛋白/mL填料"來設(shè)定,通常為DBC10%50~80%,上樣后需要3~10個(gè)柱體積的緩沖液再平衡層析柱。

 

4.4  洗雜(Wash

在緩沖液A中添加5~40mM的咪唑沖洗層析柱,可以將非特異性結(jié)合的雜蛋白除去。咪唑濃度越高,雜蛋白被除去得越徹-底,但會(huì)降低目標(biāo)蛋白的收率。洗雜過程咪唑的濃度與不同蛋白的特性相關(guān),可通過階躍洗雜過程(例如5mM、10mM20 mM……)快速優(yōu)化洗雜條件。洗雜的體積通常為3~10個(gè)柱體積。

 

4.5  洗脫(Elution)

最-常用的洗脫方式為提高洗脫液中咪唑的濃度(在緩沖液A中加入咪唑),推薦在0~500mM范圍內(nèi)進(jìn)行階躍洗脫或者線性梯度洗脫,確定最-優(yōu)的洗脫濃度。對(duì)于大多數(shù)帶組-氨酸標(biāo)簽的蛋白,50~150 mM的咪唑濃度可以將目標(biāo)蛋白洗脫完-全。

 

4.6  在位清洗(CIP

通常上述的再生過程可將填料徹-底清洗。若發(fā)生柱壓升高,或?yàn)榱吮苊饨徊嫖廴?,將金屬離子剝離后可進(jìn)行在位清洗過程??刹捎靡韵氯軇┻M(jìn)行在位清洗:2mol/L NaCl ,1mol/L NaOH、70%乙醇或 30%異丙醇等。在位清洗可有效去除介質(zhì)上的雜質(zhì),反向效果更佳。清洗后需用3~5 柱體積的純水除去上述溶劑。

 

4.7 填料保存

填料的初始保存液為20%乙醇,使用過后可繼續(xù)用20%乙醇保存。保存溫度在2~30 ℃為宜,不可凍存。

 


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